Биологические микрочипы на алюминиевой подложке с ячейками из щеточных полимеров
- Авторы: Шишкин И.Ю.1, Штылев Г.Ф.1, Барский В.Е.1, Лапа С.А.1, Заседателева О.А.1, Кузнецова В.Е.1, Шершов В.Е.1, Василисков В.А.1, Поляков С.А.1, Заседателев А.С.1, Чудинов А.В.1
-
Учреждения:
- Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
- Выпуск: Том 58, № 3 (2024)
- Страницы: 469-481
- Раздел: СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНЫЙ АНАЛИЗ БИОПОЛИМЕРОВ И ИХ КОМПЛЕКСОВ
- URL: https://transsyst.ru/0026-8984/article/view/655322
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0026898424030114
- EDN: https://elibrary.ru/JCDIJI
- ID: 655322
Цитировать
Аннотация
Представлен способ изготовления биологических микрочипов на алюминиевой подложке с гидрофильными ячейками из щеточных сополимеров с формированием матрицы ячеек методом фотолитографии. Поверхность алюминиевых подложек предварительно покрывали тонким, прочным, умеренно гидрофобным слоем перекрестно-сшитого полимера для исключения контакта с поверхностью алюминия компонентов, используемых при анализе нуклеиновых кислот. Алюминиевые подложки биочипов обладают высокой теплопроводностью и малой теплоемкостью, что актуально для мультиплексного ПЦР-анализа на чипе. В ячейках биочипа ковалентно иммобилизовали олигонуклеотидные зонды. Сохранение гибридизационной активности иммобилизованных ДНК-зондов показано в гибридизационном анализе с синтетической ДНК-мишенью, представляющей собой участок экзона 7 гена ABO человека. Представленные методы могут использоваться при разработке технологии параллельного множественного экспресс-микроанализа нуклеиновых кислот “лаборатория на чипе” для выявления соматических и инфекционных заболеваний человека
Полный текст

Об авторах
И. Ю. Шишкин
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
Г. Ф. Штылев
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
В. Е. Барский
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
С. А. Лапа
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
О. А. Заседателева
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
В. Е. Кузнецова
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
В. Е. Шершов
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
В. А. Василисков
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
С. А. Поляков
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
А. С. Заседателев
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
А. В. Чудинов
Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук
Автор, ответственный за переписку.
Email: chud@eimb.ru
Россия, Москва, 119991
Список литературы
- Yershov G., Barsky V., Belgovskiy A., Kirillov E., Kreindlin E., Ivanov I., Parinov S., Guschin D., Drobishev A., Dubiley S., Mirzabekov A. (1996) DNA analysis and diagnostics on oligonucleotide microchips. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93, 4913–4918. doi: 10.1073/pnas.93.10.4913
- Beaudet A.L., Belmont J.W. (2008) Array-based DNA diagnostics: let the revolution begin. Annu. Rev. Med. 59, 113–129. doi: 10.1146/annurev.med.59.012907.101800
- Gryadunov D., Dementieva E., Mikhailovich V., Nasedkina T., Rubina A., Savvateeva E., Fesenko E., Chudinov A., Zimenkov D., Kolchinsky A., Zasedatelev A. (2011) Gel-based microarrays in clinical diagnostics in Russia. Exp. Rev. Mol. Diagn. 11, 839–853. https://doi.org/10.1586/ERM.11.73
- Strizhkov B.N., Drobyshev A.L., Mikhailovich V.M., Mirzabekov A.D. (2000) PCR amplification on a microarray of gel-immobilized oligonucleotides: detection of bacterial toxin- and drug-resistant genes and their mutations. BioTechniques. 29, 844–857. doi: 10.2144/00294rr01
- Tillib S.V., Strizhkov B.N., Mirzabekov A.D. (2001) Integration of multiple PCR amplifications and DNA mutation analyses by using oligonucleotide microchip. Analyt. Biochemistry. 292, 155–160. doi: 10.1006/abio.2001.5082l
- Pemov A., Modi H., Chandler D.P., Bavykin S. (2005) DNA analysis with multiplex microarray-enhanced PCR. Nucl. Acids Res. 33, e11. doi: 10.1093/nar/gnh184
- Khodakov D.A., Zakharova N.V., Gryadunov D.A., Filatov F.P., Zasedatelev A.S., Mikhailovich V.M. (2008) An oligonucleotide microarray for multiplex real-time PCR identification of HIV-1, HBV, and HCV. BioTechniques. 44, 241–248. doi: 10.2144/000112628
- Chudinov A.V., Kolganova N.A., Egorov A.E., Fesenko D.O., Kuznetsova V.E., Nasedkina T.V., Vasiliskov V.A., Zasedatelev A.S., Timofeev E.N. (2015) Bridge DNA amplification of cancer-associated genes on cross-linked agarose microbeads. Microchim. Acta. 182, 557–463. doi: 10.1007/s00604–014–1357–8.
- Лапа С.А., Клочихина Е.С., Мифтахов Р.А., Заседателев А.С., Чудинов А.В. (2021) Мультиплексная ПЦР на чипе с прямой детекцией удлинения иммобилизованного праймера. Биоорган. химия. 47, 652–656. https://doi.org/10.31857/S0132342321050298
- Лапа C.А., Мифтахов Р.А., Клочихина Е.С., Аммур Ю.И., Благодатских С.А., Шершов В.Е., Заседателев А.С., Чудинов А.В. (2021) Разработка мультиплексной ОТ-ПЦР с иммобилизованными праймерами для идентификации возбудителей инфекционной пневмонии человека. Молекуляр. биология. 55, 944–955. doi: 10.1134/S0026893321040063)
- Lysov Y., Barsky V., Urasov D., Urasov R., Cherepanov A., Mamaev D., Yegorov Y., Chudinov A., Surzhikov S., Rubina A., Smoldovskaya O., Zasedatelev A. (2017) Microarray analyzer based on wide field fluorescent microscopy with laser illumination and a device for speckle suppression. Biomed. Optics Express. 8, 4798–4810. https://doi.org/10.1364/BOE.8.004798
- Spitsyn M.A., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Emelyanova M.A., Guseinov T.O., Lapa S.A., Nasedkina T.V., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. (2017) Synthetic route to novel zwitterionic pentamethine indocyanine fluorophores with various substitutions. Dyes Pigments. 147, 199–210. http://dx.doi.org/10.1016/j.dyepig.2017.07.052
- Barsky V., Perov A., Tokalov S., Chudinov A., Kreindlin E., Sharonov A., Kotova E., Mirzabekov A. (2002) Fluorescence data analysis on gel-based biochips. J. Biomol. Screening. 7, 247–257. https://doi.org/10.1177/108705710200700308
- Мифтахов Р.А., Иконникова А.Ю., Василисков В.А., Лапа С.А., Левашова А.И., Кузнецова В.Е., Шершов В.Е., Заседателев А.С., Наседкина Т.В., Чудинов А.В. (2023) Биочип с ячейками из щеточных полимеров с реактивными карбоксильными группами для анализа ДНК. Биоорган. химия. 49, 641–648. DOI: S0132342323050044
- Lee J.G., Cheong K.H., Huh N., Kim S., Choi J.W., Ko C. (2006) Microchip-based one step DNA extraction and real-time PCR in one chamber for rapid pathogen identification. Lab. Chip. 6, 886–895. https://doi.org/10.1039/B515876A
- Sin E.J., Moon Y.S., Lee Y.K., Lim J.O., Huh J.S., Choi S.Y., Sohn Y.S. (2012) Surface modification of aluminum oxide for biosensing application. Biomed. Engin: Applications, Basis, Commun. 24, 111–116. doi: 10.1142/S1016237212500093
- Chai C., Lee J., Takhistove P. (2010) Direct detection of the biological toxin in acidic environment by electrochemical impedimetric immunosensor. Sensors. 10, 11414–11427. https://doi.org/10.3390/s101211414
- Spitsyn M.A., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Emelyanova M.A., Guseinov T.O., Lapa S.A., Nasedkina T.V., Zasedatelev A.S., Chudinov A.V. (2017) Synthetic route to novel zwitterionic pentamethine indocyanine fluorophores with various substitutions. Dyes Pigments. 147, 199–210. http://dx.doi.org/10.1016/j.dyepig.2017.07.052
- Schubert J., Chanana M. (2019) Coating matters: review on colloidal stability of nanoparticles with biocompatible coatings in biological media, living cells and organisms. Curr. Med. Chem. 25(35), 4556–4586. doi: 10.2174/0929867325666180601101859
- Sim Y.J., Seo E.K. Choi G.J., Yoon S.J., Jang J. (2009) UV-induced crosslinking of poly(vinil acetate) films containing benzophenone. J. Korean Soc. Dyers Finishers. 21(4), 33–38. doi: 10.5764/TCF.2009.21.4.033
- Qu B.J., Xu Y.H., Ding L.H., Ranby B. (2000) A new mechanism of benzophenone photoreduction in photoinitiated crosslinking of polyethylene and its model compounds. J. Polym. Sci. A: Polym. Chem. 38(6), 999–1005. https://doi.org/10.1002/(SICI)1099–0518(20000315)38:6<999:: AID-POLA9>3.0.CO;2–1
- Ogiwara Y., Kanda M., Takumi M., Kubota H. (1981) Photosensitized grafting on polyolefin films in vapor and liquid phases. J. Polym. Sci. Polym. Lett. Ed. 19, 457. https://doi.org/10.1002/pol.1981.130190905
- Мифтаxов Р.А., Лапа С.А., Шеpшов В.Е., Заcедателева О.А., Гуcейнов Т.О., Cпицын М.А., Кузнецова В.Е., Мамаев Д.Д., Лыcов Ю.П., Баpcкий В.Е., Тимофеев Э.Н., Заcедателев А.С., Чудинов А.В. (2018) Получение активныx каpбокcильныx гpупп на повеpxноcти полиэтилентеpефталатной пленки и количеcтвенный анализ этиx гpупп c помощью цифpовой люминеcцентной микpоcкопии. Биофизика. 63, 661–668. https://doi.org/10.1134/S0006350918040127)
- Sorokin N.V., Chechetkin V.R., Livshits M.A., Pan’kov S.V., Donnikov M.Y., Gryadunov D.A., Lapa S.A., Zasedatelev A.S. (2014) Discrimination between perfect and mismatched duplexes with oligonucleotide gel microchips: role of thermodynamic and kinetic effects during hybridization. J. Biomol. Struct. Dynamics. 22, 725–734. doi: 10.1080/07391102.2005.10507039
Дополнительные файлы
