Штамм-специфические маркеры ризобий по данным полногеномного секвенирования

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Полевые испытания ризобиальных инокулянтов требуют использования простых и надежных методов идентификации используемых штаммов для выяснения того, какой именно штамм образовал азотфиксирующий клубенек. Эта задача возникает при испытании конкурентоспособности штаммов-инокулянтов по отношению к местным штаммам ризобий, для отслеживания судьбы штаммов-инокулянтов в длительные периоды после внесения штаммов, наконец, такие методы могут быть востребованы при защите прав собственников и разработчиков штаммов. Суть предлагаемого метода идентификации заключается в поиске штамм-специфичных участков ДНК, отсутствующих в других геномах этого же вида, и конструировании системы праймеров для мультиплексной ПЦР, позволяющей простую, надежную и быструю идентификацию штамма. Преимущества данного подхода по отношению к другим способам идентификации состоят, во-первых, в высокой воспроизводимости, а во-вторых, в том, что способ основан на детекции структурных вариантов, вклад которых в эволюцию геномов ризобий весьма высок, в то время как большинство методов геномного фингерпринтинга (AFLP, RAPD, REP, ERIC и др.) основаны на детекции нуклеотидных полиморфизмов в коротких фрагментах генома, но упускают из поля зрения множество событий, связанных с геномными перестройками и горизонтальным переносом генов. Использование предложенного метода также может послужить для мониторинга эволюционной динамики ризобиальных штаммов-инокулянтов, в особенности в уникальных фрагментах генома, что весьма важно для Rhizobium leguminosarum, где доля уникальных последовательностей намного выше, чем у других ризобий.

Полный текст

Доступ закрыт

Об авторах

Е. Е. Андронов

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Автор, ответственный за переписку.
Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

Т. С. Аксенова

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

О. П. Онищук

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

О. Н. Курчак

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

В. И. Сафронова

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

А. Г. Пинаев

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

И. В. Евсюков

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

Н. А. Проворов

Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии

Email: eeandr@gmail.com
Россия, Санкт-Петербург, 196608

Список литературы

  1. Андронов Е. Е., Петрова С. Н., Чижевская Е. П., Коростик Е. В., Ахтемова Г. А., Пинаев А. Г. Влияние внесения генетически модифицированного штамма Sinorhizobium meliloti Ach-5 на структуру почвенного сообщества микроорганизмов // Микробиология. 2009. Т. 78. С. 525‒534.
  2. Andronov E. E., Chizhevskaya E. P., Korostik E. V., Akhtemova G. A., Pinaev A. G., Petrova S. N. Influence of introducing the genetically modified strain Sinorhizobium meliloti ACH-5 on the structure of the soil microbial community // Microbiology (Moscow). 2009. V. 78. P. 474‒482.
  3. Онищук О. П., Воробьев Н. И., Проворов Н. А. Нодуляционная конкурентоспособность клубеньковых бактерий: генетический контроль и адаптивное значение // Прикл. Биохимия и микробиология. 2017. Т. 53. С. 127‒135.
  4. Onishchuk O. P., Vorobyov N. I., Provorov N. A. Nodulation competitiveness of nodule bacteria: Genetic control and adaptive significance // Appl. Biochem. Microbiol. 2017. V. 53. P. 131‒139.
  5. Сафронова В. И., Чижевская Е. П., Андронов Е. Е. Разработка методики молекулярно-генетической паспортизации штаммов сельскохозяйственных микроорганизмов с помощью AFLP-фингерпринтинга // Сельскохозяйственная биология. 2012. Т. 47. № 6. С. 116‒121.
  6. Darling A. C., Mau B., Blattner F. R., Perna N. T. Mauve: multiple alignment of conserved genomic sequence with rearrangements // Genome Res. 2004. V. 14. P. 1394‒1403.
  7. De Bruijn F. J. Use of repetitive (repetitive extragenic palindromic and enterobacterial repetitive intergeneric consensus) sequences and polymerase chain reaction to fingerprint the genomes of Rhizobium meliloti isolates and other soil bacteria // Appl. Environ. Microb. 1992. V. 58. P. 2180‒2187.
  8. Epstein B., Tiffin P. Comparative genomics reveals high rates of horizontal transfer and strong purifying selection on rhizobial symbiosis genes // Proc. Biol. Sci. 2021. V. 288. Art. 20201804.
  9. Freiberg C., Felllay R., Bairoch A., Broughton W. J., Rosenthal A., Perret X. Molecular basis of symbiosis between Rhizobium and legumes // Nature. 1997. V. 387. P. 394‒401.
  10. Guo X., Flores M., Mavingui P., Fuentes S. I., Hernandez G., Davila G., Palacios R. Natural genomic design in Sinorhizobium meliloti: novel genomic architecture // Genome Res. 2003. V. 13. P. 1810‒1817.
  11. Harrison S. P., Mytton L. R., Scøt L., Dye M., Cresswell A. Characterization of Rhizobium isolates by amplification of DNA polymorphisms using random primers // Can. J. Microbiol. 1992. V. 38. P. 1009‒1015.
  12. Jorrin B., Palacios J. M., Peix Á., Imperial J. Rhizobium ruizarguesonis sp. nov., isolated from nodules of Pisum sativum L. // Syst. Appl. Microbiol. 2020. V. 43. Art.126090.
  13. Laguerre G., Geniaux E., Mazurier S. I., Rodríguez Casartelli R., Amarger N. Conformity and diversity among field isolates of Rhizobium leguminosarum bv. viciae, bv. trifolii, and bv. phaseoli revealed by DNA hybridization using chromosome and plasmid probes // Can. J. Microbiol. 1992. V. 39. P. 412‒419.
  14. Laguerre G., Allard M. R., Revoy F., Amarger N. Rapid identification of Rhizobia by restriction fragment length polymorphism analysis of PCR-amplified 16S rRNA genes // Appl. Environ. Microb. 1994. V. 60. P. 56‒63.
  15. Provorov N. A., Andronov E. E., Kimeklis A. K., Onishchuk O. P., Igolkina A. A., Karasev E. S. Microevolution, speciation and macroevolution in rhizobia: genomic mechanisms and selective patterns // Front. Plant. Sci. 2022. V. 13. Art. 1026943.
  16. Rahimah A. R., Cheah S. C., Rajinder S. Freeze drying of oil palm (Elaeis guineensis) leaf and its effect on the quality of extractable DNA // J. Oil Palm Res. 2006. V. 18. P. 296‒304.
  17. Rosselli R., La Porta N., Muresu R., Stevanato P., Concheri G., Squartini A. Pangenomics of the symbiotic Rhizobiales. Core and accessory functions across a group endowed with high levels of genomic plasticity // Microorganisms. 2021. V. 9. Art. 407.
  18. Safronova V., Sazanova A., Belimov A., Guro P., Kuznetsova I., Karlov D., Chirak E., Yuzikhin O., Verkhozina A., Afonin A., Tikhonovich I. Synergy between rhizobial co-microsymbionts leads to an increase in the efficiency of plant–microbe interactions // Microorganisms. 2023. V. 11. Art. 1206.
  19. Vos P., Hogers R., Bleeker M., Rejans M., Van de Lee T., Hornes M., Frijters A., Pot J., Peleman J., Kupier M., Zabeau M. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting // Nucleic Acids Res. 1995. V. 23. P. 4407‒4414.
  20. Young J. P., Crossman L. C., Johnston A. W., Thomson N. R., Ghazoui Z. F., Hull K. H., Wexler M., Curson A. R., Todd J. D., Poole P. S., Mauchline T. H., East A. K., Quail M. A., Churcher C., Arrowsmith C., Cherevach I., Chillingworth T., Clarke K., Cronin A., Davis P., Fraser A., Hance Z., Hauser H., Jagels K., Moule S., Mungall K., Norbertczak H., Rabbinowitsch E., Sanders M., Simmonds M., Whitehead S., Parkhill J. The genome of Rhizobium leguminosarum has recognizable core and accessory components // Genome Biol. 2006. V. 7. R34. https://doi.org/10.1186/gb-2006-7-4-r34
  21. Young J. P.W., Moeskjær S., Afonin A., Rahi P., Maluk M., James E. K., Cavassim M. I.A., Rashid M. H., Aserse A. A., Perry B. J., Wang E. T., Velázquez E., Andronov E. E., Tampakaki A., Flores Félix J. D., Rivas González R., Youseif S. H., Lepetit M., Boivin S., Jorrin B., Kenicer G. J., Peix Á., Hynes M. F., Ramírez-Bahena M.H., Gulati A., Tian C. F. Defining the Rhizobium leguminosarum species complex // Genes. 2021. V. 12. Art. 111. https://doi.org/10.3390/genes12010111

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Дополнительные материалы
Скачать (210KB)
3. Рис. 1. Выравнивание хромосом геномов штаммов RCAM1365 и RCAM0626. Звездочкой отмечены три самых крупных уникальных фрагмента для каждой из хромосом.

Скачать (274KB)
4. Рис. 2. Амплификация маркерных фрагментов для штамма RCAM0626 (а) и RCAM1365 (б). Номера соответствуют праймерам в табл. 2 и 3.

Скачать (107KB)
5. Рис. 3. Мультиплексная ПЦР с 10-ю парами праймеров для маркирования штаммов: а ‒ штамм RCAM1365 (фрагменты 1, 2, 3, 5, 6, 7 в соответствии с табл. 2 отмечены красными точками); б ‒ штамм RCAM0626 (фрагменты 1, 2, 4, 5, 6, 8 в соответствии с табл. 3 отмечены красными точками). В качестве контролей использованы штаммы RCAM0626, RCAM1365 и 11 штаммов R. leguminosarum различного происхождения.

Скачать (155KB)

© Российская академия наук, 2025