Влияние плазменной обработки биомедицинских матриксов на адгезию нейрональных клеток

А. Азиева; Азиева А. М.; Т. Григорьев; Григорьев Т. Е.; Н. Шарикова; Шарикова Н. А.; К. Луканина; Луканина К. И.; Р. Камышинский; Камышинский Р. А.; Р. Шариков; Шариков Р. В.; А. Михуткин; Михуткин А. А.; Т. Пацаев; Пацаев Т. Д.; Д. Кириллова; Кириллова Д. А.; Е. Ястремский; Ястремский Е. В.; А. Васильев; Васильев А. Л.

doi:10.31857/S0023476123600210

Влияние плазменной обработки биомедицинских матриксов на адгезию нейрональных клеток

Authors: Азиева А.¹, Григорьев Т.¹, Шарикова Н.¹, Луканина К.¹, Камышинский Р.¹^,2, Шариков Р.¹, Михуткин А.¹, Пацаев Т.¹, Кириллова Д.¹, Ястремский Е.¹^,2, Васильев А.¹^,2^,3
Affiliations:
1. Национальный исследовательский центр “Курчатовский институт”
2. Институт кристаллографии им. А.В. Шубникова ФНИЦ “Кристаллография и фотоника” РАН
3. Московский физико-технический институт
Issue: Vol 68, No 6 (2023)
Pages: 983-989
Section: КРИСТАЛЛОГРАФИЯ В БИОЛОГИИ И МЕДИЦИНЕ
URL: https://transsyst.ru/0023-4761/article/view/673322
DOI: https://doi.org/10.31857/S0023476123600210
EDN: https://elibrary.ru/JJWTPR
ID: 673322

Cite item

Full Text

Open Access
Restricted Access

Access granted
Restricted Access

Subscription Access

Abstract
About the authors
References
Supplementary files
Statistics

Abstract

Адгезивные свойства матриксов, преимущественно зависящие от химических и структурных особенностей их поверхности, играют важнейшую роль в тканевой инженерии. С помощью флуоресцентной и растровой электронной микроскопии в режиме окружающей среды исследована адгезия клеток диссоциированной нейрональной культуры на изотропных и анизотропных нетканых и губчатых матриксах из полилактида. Нейроны, полученные из головного мозга новорожденных мышей, демонстрировали улучшенную адгезию на матриксах всех типов после обработки плазмой, при этом наиболее выраженный эффект наблюдался на неориентированных матриксах.

References

Suñol C., Babot Z., Fonfría E. et al. // Toxicol. In. Vitro. 2008. V. 22. P. 1350. https://doi.org/10.1016/j.tiv.2008.03.009
Ji C., Tang M., Johnson G.V. // Methods Cell Biol. 2017. V. 141. P. 229. https://doi.org/10.1016/bs.mcb.2017.06.011
Wellbourne-Wood J., Chatton J.Y. // ACS Chem. Neurosci. 2018. V. 9. P. 1975. https://doi.org/10.1021/acschemneuro.8b00098
Zhang Y., Venkateswaran S., Higuera G.A. et al. // Adv. Healthc. Mater. 2020. V. 9. № 4. P. 1901347. https://doi.org/10.1002/adhm.201901347
Huang W., Sunami Y., Kimura H., Zhang S. // Nanomaterials. 2018. V. 8. P. 519.
Giordano G.G., Thomson R.C., Ishaug S.L. et al. // J. Biomed. Mater. Res. 1997. V. 34. P. 87. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-4636(199701)34:1< 87::AID-JBM12>3.0.CO;2-M
Huang H.D., Xu J.Z., Fan Y. et al. // J. Phys. Chem. B. 2013. V. 117. P. 10641. https://doi.org/10.1021/jp4055796
Annunziata M., Nastri L., Cecoro G., Guida L. // Molecules. 2017. V. 22. P. 2214.
Okamura Y., Kabata K., Kinoshita M. et al. // Adv. Mater. 2009. V. 21. P. 4388. https://doi.org/10.1002/adma.200901035
Ястремский Е.В., Пацаев Т.Д., Михуткин А.А. и др. // Кристаллография. 2022. V. 67. № 3. С. 421. https://doi.org/10.31857/S0023476122030249
Morent R., De Geyter N., Desmet T. et al. // Plasma Processes Polym. 2011. V. 8. № P. 171. https://doi.org/10.1002/ppap.201000153
Asadian M., Chan K.V., Norouzi M. et al. // Nanomaterials. 2020. V. 10. P. 119.
Travnickova M., Kasalkova N.S., Sedlar A. et al. // Biomed. Mater. 2021. V. 16. № 2. P. 25016. https://doi.org/10.1088/1748-605X/abaf97
Yu X., Mengsteab P.Y., Narayanan G. et al. // Engineering. 2021. V. 7. № 2. P. 153. https://doi.org/10.1016/j.eng.2020.02.010
Santoro M., Shah S.R., Walker J.L., Mikos A.G. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2016. V. 107. P. 206. https://doi.org/10.1016/j.addr.2016.04.019
Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
Kleiman R., Banker G., Steward O. // J. Neurosci. 1994. V. 14. № 3. P. 1130. https://doi.org/10.1523/JNEUROSCI.14-03-01130.1994
Sokolov I., Azieva A., Burtsev M. // Biologically Inspired Cognitive Architectures (BICA) for Young Scientists. Springer, 2016. P. 241.
Kopaeva M.Y., Azieva A.M., Cherepov A.B. et al. // Patogenez. 2021. V. 19. № 1. P. 74.
Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E. et al. // Nature Methods. 2012. V. 9. № 7. P. 676. https://doi.org/10.1038/nmeth.2019
Kudryavtseva V., Stankevich K., Gudima A. et al. // Mater. Des. 2017. V. 127. P. 261. https://doi.org/10.1016/j.matdes.2017.04.079
Poll H.U., Schladitz U., Schreiter S. // Surf. Coat. Technol. 2001. V. 142–144. P. 489. https://doi.org/10.1016/S0257-8972(01)01055-6
Ivanov V.B., Behnisch J., Hollander A. et al. // Surf. Interface Anal. 1996. V. 24. P. 257.
Jordá-Vilaplana A., Fombuena V., García-García D. et al. // Eur. Polym. J. 2014. V. 58. P. 23. https://doi.org/10.1016/j.eurpolymj.2014.06.002
Bolbasov E.N., Maryin P.V., Stankevich K.S. et al. // Colloids Surf. B. 2018. V. 162. P. 43. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2017.11.028
Yang L., Chen J., Guo Y., Zhang Z. // Appl. Surf. Sci. 2009. V. 255. № 8. P. 4446. https://doi.org/10.1016/j.apsusc.2008.11.048
Wang M., Favi P., Cheng X. et al. // Acta Biomater. 2016. V. 46. P. 256. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2016.09.030
Nakagawa M., Teraoka F., Fujimoto S. et al. // J. Biomed. Mater. Res. A. 2006. V. 77. P. 112. https://doi.org/10.1002/jbm.a.30521
Teraoka F., Nakagawa M., Hara M. // Dent. Mater. J. 2006. V. 25. P. 560. https://doi.org/10.4012/dmj.25.560